دراسة العلاقة بين مستوى معايير الأضداد والتغيرات النسيجية التي تطرأ على الطحال عند دجاج اللحم الملقح بلقاح الجامبورو المتوسط المقوى
الكلمات المفتاحية:
مرض الجامبورو، لقاح المتوسط المقوى، الطحال، تغيرات نسيجيةالملخص
هدف هذا البحث الى دراسة تأثير اعطاء اللقاح المتوسط المقوى على معايير الأضداد وعلى نسيج الطحال ضد المرض. اجريت التجربة على 300 صوص وزعت إلى ثلاث مجموعات. المجموعة الاولى (A): شاهد ايجابي خمجت تجريبياً بعترة الجامبورو المعزولة حقياً ولم تلقح. المجموعة الثانية (B): شاهد سلبي لم تتعرض للخمج ولم تلقح. المجموعة الثالثة (C): خمجت ولقحت باللقاح المتوسط المقوى وفق الجدول الزمني اعتمادا على مستوى المناعة الامية. وفي اليوم الحادي والثلاثين من التجربة جرى اعدام عشرة طيور من كل مجموعة وأخذ الطحال للفحص النسيجي المرضي وتم سحب عينات دم بالأعمار التالية 23 و33 و43 وذلك لقياس معايير الأضداد في كل المجموعات. أظهرت النتائج وجود علاقة بين ارتفاع مستوى معايير الأضداد لمرض الجامبورو مع التأثيرات النسيجية على الطحال حيث كانت المجموعة الملقحة (C) والمجموعة (B) هما الأقل عرضة للآفات النسيجية على الطحال مقارنة بالمجموعة (A)
المراجع
1. Damairia, B. A., Putri, K., & Wibowo, M. H. (2023). Examination of macroscopic and microscopic lesions in IBDV-infected organs and molecular characterization of IBDV VP1 gene fragments obtained from commercial broiler farms in Indonesia. Veterinary World, 16(5), 1061.
2. Eterradossi, Y.M.S. (2020) Infectious bursal disease. In: Swayne, D.E., editors. Diseases of Poultry. 14th ed. Wiley Blackwell, New York. p257-283.
3. Habash, S. F., & Kako, M. D. (2008). Gross histological changes in some lymphoid organs in broilers after vaccination against infectious bursal disease. Iraqi Journal of Veterinary Sciences, 22(2), 101-109.
4. Ingrao, F., Rauw, F., Lambrecht, B., & van den Berg, T. (2013). Infectious bursal disease: a complex host–pathogen interaction. Developmental & Comparative Immunology, 41(3), 429-438.
5. LUNA LG (1968). Manual of histological stanng methods of the Armed Forces Institute of Pathology. 3rd ed. The Blakiston Division, McGraw-Hill Book Company, New York.
6. Reed, L. J., & Muench, H. (1938). A simple method of estimating fifty per cent endpoints.
7. Sedeik, M. E., El-Shall, N. A., Awad, A. M., Abd El-Hack, M. E., Alowaimer, A. N., & Swelum, A. A. (2019). Comparative evaluation of HVT-IBD vector, immune complex, and live IBD vaccines against vvIBDV in commercial broiler chickens with high maternally derived antibodies. Animals, 9(3), 72.
8. Sharma, J.M.; Kim, I.J.; Rautenschlein, S.; Yeh, H.Y. Infectious bursal disease virus of chickens: Pathogenesis and immunosuppression. Dev. Comp. Immunol. 2000, 24, 223–235.
9. Subler, K. A., Mickael, C. S., & Jackwood, D. J. (2006). Infectious bursal disease virus-induced immunosuppression exacerbates Campylobacter jejuni colonization and shedding in chickens. Avian diseases, 50(2), 179-184.
10. Michel, L. O., & Jackwood, D. J. (2017). Classification of infectious bursal disease virus into genogroups. Archives of virology, 162, 3661-3670.
11. Lupini C, Giovanardi D, Pesente P, Bonci M, Felice V, Rossi G, Morandini E, Cecchinato M, Catelli E (2016) A molecular epidemiology study based on VP2 gene sequences reveals that a new genotype of infectious bursal disease virus is dominantly prevalent in Italy. Avian Pathol 45:458–464.
