الملخص
أُجريَّ هذا البحثِ لدراسةِ الاستجابات الفيزيولوجية لدى الخيول العربية الأصيلة من خلالِ معرفة التغيرات الدموية في مستوى تركيز خضاب الدم وعدد الكريات الحمر قبل وبعد سباق 1600 متر ومعرفة تأثير الخلاصات الطبية لنباتات الجينسنغ والأملج والقسط الهندي والقولنجان وبذور الكرفس والخردل بالإضافة إلى مجموعة فيتامين ب والعسل الموجودة ضمن مُستحضر أو (مُكمِل) إنرجي فورت في تحسين الاستجابات الفيزيولوجية الدموية والتخفيف من بعض آثارِ التَعب العضلي بعد السباق.
وُزعتْ الخيول إلى خمسة مجموعات، ضمت كل مجموعة ستة خيول بأوزان متقاربة وفق التالي:
• المجموعة الأولى (G1): مجموعة الشاهد الطبيعي تُركت الخيولُ دونَ إجراء أي سباق أو تمرين رياضي، لمعرفةِ القيم الطبيعيةِ للمتغيرات الفيزيولوجية المدروسة (عدد الكريات الحمر، خضاب الدم)، واعتُبرت على أنها مجموعة شاهد سلبي.
• المجموعة الثانية(G2) : خَضَعتْ الخيول لسباق سرعة بمسافة (1600) متر، ثم جُمعتْ منها عينات الدم بعد السباق مباشرةً، حيث اعتُبرتْ هذه المجموعة شاهد إيجابي للمجموعة الثالثة.
• المجموعة الثالثة(G3) : أُعطيتْ الخيولُ في هذه المجموعة مكمل إنرجي فورت بجرعة مقدارها 2 مل/100 كغ وزن حي قبل سباق 1600 متر مباشرةً، ثم جُمعت منها عينات الدم بعد السباق مباشرةً.
• المجموعة الرابعة(G4) : خَضَعتْ الخيولُ لسباق سرعة بمسافة (1600) متر، ثم جُمعت منها عينات الدم بعد السباق مباشرةً، حيث اُعتبرت هذه المجموعة شاهد إيجابي للمجموعة الخامسة.
• المجموعة الخامسة (G5): خَضَعت الخيول في هذه المجموعة لسباق سرعة مسافة (1600) متر، ثم أُعطيت مُكمِلُ إنرجي فورت بجرعة مقدارها 2 مل/100 كغ وزن حي بعد السباق مباشرةً، وبعَدَ نصف ساعةً من إعطاء المُكمل جُمِعَتْ عينات الدم من هذه المجموعة.
تمَّ الحصول على جميع العينات الدموية من الوريد الوداجي.
أظهرت النتائج: حدوثَ تغيراتٍ حقيقيةٍ في الاستجابات الفيزيولوجية تمثلت بحدوثِ ارتفاع معنوي (P≤0.0001) في متوسطات تركيز خضاب الدم وعدد الكريات الحمر بعد السباق في مجموعات الشاهد الإيجابي (G4-G2) عندَ مقارنتهما مع مجموعة الشاهد الطبيعي (G1)، وحدوثِ انخفاض معنوي (P≤0.0001) في متوسطات تركيز خضاب الدم وعدد الكريات الحمر بعدَ السباق في مجموعات السباق (G5-G3) المعطاة مُكمِل إنرجي فورت قبل وبعدَ السباق عندَ مقارنتهما مع مجموعة الشاهد الإيجابي (G2-G4).
المراجع
2. Bain, S., Ramamurthy, N. S., Impeduglia, T., Scolman, S., Golub, L. M., & Rubin, C. (1997). Tetracycline prevents cancellous bone loss and maintains near-normal rates of bone formation in streptozotocin diabetic rats. Bone, 21(2), 147-153.
3. Bettany JT, Peet NM, Wolowacz RG, Skerry TM, Grabowski PS (2000) Tetracyclines induce apoptosis in osteoclasts. Bone 27: 75–80.
4. Bevelander, G., Nakahara, H., & Rolle, G. K. (1960). The effect of tetracycline on the development of the skeletal system of the chick embryo. Developmental biology, 2, 298–312.
5. Cheng, W., Yue, Y., Fan, W., Hu, Y., Wang, X., Pan, X., ... & Zhang, P. (2012). Effects of tetracyclines on bones: an ambiguous question needs to be clarified. Die Pharmazie-An International Journal of Pharmaceutical Sciences, 67(5), 457-459.
6. Cohlan, S. Q., Bevelander, G., & Tiamsic, T. (1963). Growth inhibition of prematures receiving tetracycline: a clinical and laboratory investigation of tetracycline-induced bone fluorescence. American Journal of Diseases of Children, 105(5), 453-461.
7. Czeizel, A. E., and Rockenbauer, M. (2000). A population-based case-control teratologic study of oral oxytetracycline treatment during pregnancy. European Journal of Obstetrics and Gynecology and Reproductive Biology, 88(1), 27-33.
8. Dashe, J. S., and Gilstrap III, L. C. (1997). Antibiotic use in pregnancy. Obstetrics and gynecology clinics of North America, 24(3), 617-629.
9. Donahue, H. J., Iijima, K., Goligorsky, M. S., Rubin, C. T., & Rifkin, B. R. (1992). Regulation of cytoplasmic calcium concentration in tetracycline‐treated osteoclasts. Journal of Bone and Mineral Research, 7(11), 1313-1318.
10. Duewelhenke, N., Krut, O., & Eysel, P. (2007). Influence on mitochondria and cytotoxicity of different antibiotics administered in high concentrations on primary human osteoblasts and cell lines. Antimicrobial agents and chemotherapy, 51(1), 54-63.
11. Faggion Jr, C. M. (2012). Guidelines for reporting pre-clinical in vitro studies on dental materials. Journal of Evidence Based Dental Practice, 12(4), 182-189.
12. Graur, D., Duret, L., and Gouy, M. (1996). Phylogenetic position of the order Lagomorpha (rabbits, hares and allies). Nature, 379(6563), 333-335.
13. Halme, J., & Aer, J. (1968). Effect of tetracycline on synthesis of collagen and incorporation of 45calcium into bone in foetal and pregnant rats. Biochemical Pharmacology, 17(8), 1479-1484.
14. Hautekeete, M. (1995). Hepatotoxicity of antibiotics. Acta gastro-enterologica Belgica, 58(3-4), 290-296.
15. Holmes SG, Still K, Buttle DJ, Bishop NJ, Grabowski PS (2004) Chemically modified tetracyclines act through multiple mechanisms directly on osteoclast precursors. Bone 35: 471–478.
16. Holmes, S. G., Still, K., Buttle, D. J., Bishop, N. J., & Grabowski, P. S. (2004). Chemically modified tetracyclines act through multiple mechanisms directly on osteoclast precursors. Bone, 35(2), 471-478.
17. Hughes, W. H., Lee, W. R., & Flood, D. J. (1965). A comparative study of the actions of six tetracyclines on the development of the chick embryo. British journal of pharmacology and chemotherapy, 25(2), 317–323.
18. Kaleelullah, R. A., and Garugula, N. (2021). Teratogenic Genesis in Fetal Malformations. Cureus, 13(2).
19. Kirkwood, K., Martin, T., Agnello, K., & Kim, Y. J. (2004). Differential regulation of MMP-13 by chemical modified tetracyclines in osteoblasts. Journal of the International Academy of Periodontology, 6(2), 39-46.
20. Laitinen O. (1967). The metabolism of collagen and its hormonal control in the rat with special emphasis on the interactions of collagen and calcium in the bones. Acta endocrinologica, 56, 1–86.
21. Likins, R. C., & Pakis, G. A. (1965). Foetal uptake of radiocalcium in tetracycline-treated rats. Nature, 207(5004), 1394–1395.
22. Linnett, P., & Dagg, P. (2005). The veterinary pharmacovigilance program of the APVMA. Australian veterinary journal, 83(1‐2), 32-37.
23. Miziara, I. D., Magalhães, A. T. d. M., Santos, M. d. A., Gomes, É. F., and Oliveira, R. A. d. (2012). Research ethics in animal models. Brazilian Journal of otorhinolaryngology, 78, 128-131.
24. Moore, K. (1988). The Developing Нuman. In: WB Saunders Philadelphia.
25. Niebyl, J. R. (2003). Antibiotics and other anti-infective agents in pregnancy and lactation. American journal of perinatology, 20(08), 405-414.
26. Paixão, R. L., and Schramm, F. R. (1999). Ethics and animal experimentation: what is debated? Cadernos de Saúde Pública, 15, S99-S110.
27. Philippart, P., Brasseur, M., Hoyaux, D., & Pochet, R. (2003). Human Recombinant Tissue Factor, Platelet-rich Plasma, and Tetracycline Induce a High-Quality Human Bone Graft: A 5-year Survey. International Journal of Oral & Maxillofacial Implants, 18(3).
28. Rall, D. P., Loo, T. L., Lane, M., & Kelly, M. G. (1957). Appearance and persistence of fluorescent material in tumor tissue after tetracycline administration. Journal of the National Cancer Institute, 19(1), 79-85.
29. Rall, D. P., Loo, T. L., Lane, M., & Kelly, M. G. (1957). Appearance and persistence of fluorescent material in tumor tissue after tetracycline administration. Journal of the National Cancer Institute, 19(1), 79-85.
30. Ramamurthy, N. S., Rifkin, B. R., Greenwald, R. A., Xu, J. W., Liu, Y., Turner, G., ... & Vernillo, A. T. (2002). Inhibition of matrix metalloproteinase‐mediated periodontal bone loss in rats: A comparison of 6 chemically modified tetracyclines. Journal of periodontology, 73(7), 726-734.
31. Riviere, J. E., & Papich, M. G. (Eds.). (2018). Veterinary pharmacology and therapeutics. John Wiley & Sons.
32. RJ, G., & TE, R. (1960). Transplacental transmission of demethylchlortetracycline and toxicity studies in premature and full term, newly born infants. Antibiotic Medicine & Clinical Therapy (New York, NY), 7, 618-622.
33. Sasaki, T., Kaneko, H., Ramamurthy, N. S., & Golub, L. M. (1991). Tetracycline administration restores osteoblast structure and function during experimental diabetes. The Anatomical Record, 231(1), 25-34.
34. Schimandle, J. H., and Boden, S. D. (1994). Spine update. The use of animal models to study spinal fusion. Spine, 19(17), 1998-2006.
35. Schlegel, P. N., Chang, T., and Marshall, F. F. (1991). Antibiotics: potential hazards to male fertility. Fertility and sterility, 55(2), 235-242.
36. Sternberg, J., Légaré, J. M., & Marcil, B. (1969). Kinetic studies with labeled bone-seekers in pregnant and lactating rats. The International Journal of Applied Radiation and Isotopes, 20(2), 81-95.