دراسة عن انتشار اليرقات الثالثة Contracaecum spp.  لدى أسماك السلور (Silurus glanis L.  ) في محافظة حماة

ميسم الفنار; أحمد السمان; مرهف لحلح

المقالات

مجلد 1 عدد 1 (2026): إصدار العدد الأول من مجلة جامعة حماة _ سلسلة العلوم الطبية والصحية

دراسة عن انتشار اليرقات الثالثة Contracaecum spp. لدى أسماك السلور (Silurus glanis L. ) في محافظة حماة

ميسم الفنار^▸^▾
أحمد السمان
مرهف لحلح

دراسة عن انتشار اليرقات الثالثة Contracaecum spp. لدى أسماك السلور (Silurus glanis L. ) في محافظة حماة

مقدم: مايو 31, 2026
منشور: أغسطس 27, 2026

الملخص

هدفت هذه الدراسة إلى تقييم نسبة انتشار الطور اليرقي الثالث (L3) لطفيلي Contracaecum spp.، و انتشارها الموسمي، والعوامل البيئية المؤثرة عليها في أسماك السلور الأوروبي (Silurus glanis L.) المستزرعة ضمن نظام شبه مكثف في الأحواض الترابية.وقد تم جمع 60 عينة من الأسماك بشكل عشوائي على مدار 12 شهراً متتالياً (من تموز 2023 حتى حزيران 2024).

تم تسجيل القياسات الحيوية للأسماك (الطول والوزن والعمر)، بالإضافة إلى قياس العوامل اللاحيوية للمياه، والتي شملت درجة الحرارة (t)، والأكسجين المذاب(Do)، والأس الهيدروجيني(ph).

أظهرت النتائج تسجيل الطور اليرقي الثالث(L3) لطفيلي Contracaecum spp. بنسبة انتشار بلغت 6.67% (4/60)، مع شدة إصابة تراوحت بين 12–14 يرقة لكل سمكة مصابة.

وقد تركزت الإصابات خلال شهري (أيار–حزيران)، مما يدل على وجود انتشار موسمي واضح. كما أظهر التحليل الإحصائي وجود علاقة طردية معنوية بين درجة حرارة الماء ومعدل الإصابة (r = 0.65, p < 0.05)، وعلاقة عكسية معنوية مع تركيز الأكسجين المذاب (r = −0.60, p < 0.05)، في حين لم يُظهر الأس الهيدروجيني أي تأثير معنوي.

تشير هذه النتائج إلى الدور المهم للعوامل الحيوية واللاحيوية في تحديد آلية انتقال الطفيليات ضمن أنظمة الاستزراع السمكي.

المراجع

.7 المراجع العربية:
1. دالي،خولة عبدلله 1999:مساهمة في دراسة التحاليل الجرثومية الغذائية عند بعض الحيوانات المائية ،رسالة ماجستير جامعة تشرين-كلية العلوم –قسم علوم طبيعية ،صفحة 150.
2. السمان ،أحمد حمدي،1998.علم الأسماك،الجزء النظري،منشورات جامعة البعث-كلية الطب البيطري.
References:
1. Ali.H.G.(2017).Study Heavy Metal Concentrations in drinking Water In Diwaniya City. Muthanna Journal of Engineering and Technology, 5(2),40-44.
2. Al-Maliki, G. M.; Al-Khafaji, K. K. and Al-Shemary, A. J. (2015). Incidence of parasites in Tilapia zillii from Tigris at north of Qurna with some environmental parameters of the River. J. Basrah Res. Sci., 41(2) A: 86-92.
3. Al-Warid, H. S., Aldhamin, A. S., & Al-Moussawi, A. A. (2021). Accumulation of some heavy metals in larvae of Contracaecum SP. and their host tigris catfish Silurus triostegus Heckel, 1843 in Baghdad, Iraq. Bulletin of the Iraq Natural History Museum (P-ISSN: 1017-8678, E-ISSN: 2311-9799), 16(4), 623-634.
4. Amlacher, E. (1970). Textbook of fish diseases (Engl. Transl.). TFH Publ., Jersey city: 302pp.
5. Clayton, D. H., & Moore, J. (Eds.). (1997). Host-parasite evolution: general principles and avian models (pp. xiii+-473).
6. Davidovich, N., Tedesco, P., Caffara, M., Luci, V., Cantori, A., Morick, D., ... & Gustinelli, A. (2023). Low prevalence of Contracaecum third-stage larvae parasitizing sea of Galilee fisheries: 1-year survey after 57 years of no information. Food and Waterborne Parasitology, 32, e00204.
7. Demska-Zakes, K., & Zakes, Z. (2002). Controlled spawning of pikeperch, Stizostedion lucioperca (L.), in lake cages.
8. Duijn, C. V. (1973). Diseases of fishes 3rd ed. London I Liffe Book.
9. Fernando, C. H. (1972). Methods for the study of freshwater fish parasites (No. 12). University of Waterloo; Department of Biology.
10. Ftohe, Z. I., & Abdul Fraj, S. A. (2008). Histological structure of the cyst wall of Contracaecum larva and the histopathology in the stomach of Silurus glanis. Rafidain Journal of Science, 19(4), 59–71.
11. Gökçen, A. (2008). Fixation, staining and preparation of permanent mounts of helminths. Turkiye parazitolojii dergisi, 32(2), 177-181.
12. Hoffman, G. L. (2019). Parasites of North American freshwater fishes. Cornell University Press.
13. Khalili Tilami, S., & Sampels, S. (2017). Nutritional value of fish: lipids, proteins, vitamins, and minerals. Reviews in Fisheries Science & Aquaculture, 26(2), 243-253.
14. Mocho, J. P., Blasco, J. R., Lundegaard, P. R., McKimm, R., Jenčič, V., & Krogh, K. V. (2025). Methods of humane killing of laboratory fish: FELASA Working Group recommendations. Laboratory Animals, 59(5), 599-613.
15. Marcogliese, D.J. (2016). The distribution and abundance of parasites in aquatic ecosystems in a changing climate: More than just temperature. Integrative and Comparative Biology, 56(4), 611–619.
16. Marcogliese, D.J. (2008). The impact of climate change on the parasites and infectious diseases of aquatic animals. Revue Scientifique et Technique, 27(2), 467–484.
17. Moravec, F. (1994). Parasitic nematodes of freshwater fishes of Europe (Vol. 470). Dordrecht: Kluwer Academic Publishers.
18. Noor El-Deen, A. I.; Abd El Hady, O. K.; Liala, A. M. and Zaki, M. S. (2015). A trial for control of some parasites diseases cultured Orechromis niloticus in Egypt. Life Sci. J., 12(8): 25-29.
19. Oybek, A., Bakhrom, S., Eldor, N., Jaloliddin, N., Karomat, B., Rokhatoy, K., & Abdurakhim, K. (2025). Morphological and Molecular Survey of Contracaecum Larvae (Nematoda: Anisakidae); Endoparasites of Fish in Uzbekistan. Egyptian Journal of Aquatic Biology & Fisheries, 29(2).
20. Ozer, A. (1999). The relationship between occurrence of ectoparasites, temperature and culture conditions: a comparison of farmed and wild common carp (Cyprinus carpio L., 1758) in the Sinop region of northern Turkey. Journal of Natural History, 33(4), 483-491.
21. Pritchard, M. H., & Kruse, G. O. (Eds.). (1982). The collection and preservation of animal parasites (pp. iv-+).
22. Shamsi, S., Turner, A., & Wassens, S. (2018). Description and genetic characterization of a new Contracaecum larval type (Nematoda: Anisakidae) from Australia. Journal of Helminthology, 92(2), 216-222.
23. Vuić, N., Turković Čakalić, I., Vlaičević, B., Stojković Piperac, M., & Čerba, D. (2022). The influence of Contracaecum larvae (Nematoda, Anisakidae) parasitism on the population of Prussian carp (Carassius gibelio) in Lake Sakadaš, Croatia. Pathogens, 11(5), 600.
24. Younis, A. E., Saad, A. I., & Rabei, J. M. (2017). The occurrence of Contracaecum sp. larvae (Nematoda: Anisakidae) in four teleostean species from Lake Nasser, Egypt: morphological and molecular studies. The Journal of Basic and Applied Zoology, 78(1), 9.‏

الكلمات المفتاحية

Array
Array
Array
Array
Array

كيفية الاقتباس

دراسة عن انتشار اليرقات الثالثة Contracaecum spp. لدى أسماك السلور (Silurus glanis L. ) في محافظة حماة. (2026). سلسلة العلوم الطبية والصحية في مجلة جامعة حماة, 1(1). https://hama-univ.edu.sy/ojs/index.php/SH/article/view/3671

المؤلفات المشابهة

رهف محمد الدياب, تقييم انتشار آلام أسفل الظهر وشدتها والعوامل المهنية المرتبطة بها لدى الممرضين العاملين في مشفى حماة الوطني , سلسلة العلوم الطبية والصحية في مجلة جامعة حماة: مجلد 1 عدد 1 (2026): إصدار العدد الأول من مجلة جامعة حماة _ سلسلة العلوم الطبية والصحية

يمكنك أيضاً إبدأ بحثاً متقدماً عن المشابهات لهذا المؤلَّف.

[1] .7 المراجع العربية:

[2] 1. دالي،خولة عبدلله 1999:مساهمة في دراسة التحاليل الجرثومية الغذائية عند بعض الحيوانات المائية ،رسالة ماجستير جامعة تشرين-كلية العلوم –قسم علوم طبيعية ،صفحة 150.

[3] 2. السمان ،أحمد حمدي،1998.علم الأسماك،الجزء النظري،منشورات جامعة البعث-كلية الطب البيطري.

[4] References:

[5] 1. Ali.H.G.(2017).Study Heavy Metal Concentrations in drinking Water In Diwaniya City. Muthanna Journal of Engineering and Technology, 5(2),40-44.

[6] 2. Al-Maliki, G. M.; Al-Khafaji, K. K. and Al-Shemary, A. J. (2015). Incidence of parasites in Tilapia zillii from Tigris at north of Qurna with some environmental parameters of the River. J. Basrah Res. Sci., 41(2) A: 86-92.

[7] 3. Al-Warid, H. S., Aldhamin, A. S., & Al-Moussawi, A. A. (2021). Accumulation of some heavy metals in larvae of Contracaecum SP. and their host tigris catfish Silurus triostegus Heckel, 1843 in Baghdad, Iraq. Bulletin of the Iraq Natural History Museum (P-ISSN: 1017-8678, E-ISSN: 2311-9799), 16(4), 623-634.

[8] 4. Amlacher, E. (1970). Textbook of fish diseases (Engl. Transl.). TFH Publ., Jersey city: 302pp.

[9] 5. Clayton, D. H., & Moore, J. (Eds.). (1997). Host-parasite evolution: general principles and avian models (pp. xiii+-473).

[10] 6. Davidovich, N., Tedesco, P., Caffara, M., Luci, V., Cantori, A., Morick, D., ... & Gustinelli, A. (2023). Low prevalence of Contracaecum third-stage larvae parasitizing sea of Galilee fisheries: 1-year survey after 57 years of no information. Food and Waterborne Parasitology, 32, e00204.

[11] 7. Demska-Zakes, K., & Zakes, Z. (2002). Controlled spawning of pikeperch, Stizostedion lucioperca (L.), in lake cages.

[12] 8. Duijn, C. V. (1973). Diseases of fishes 3rd ed. London I Liffe Book.

[13] 9. Fernando, C. H. (1972). Methods for the study of freshwater fish parasites (No. 12). University of Waterloo; Department of Biology.

[14] 10. Ftohe, Z. I., & Abdul Fraj, S. A. (2008). Histological structure of the cyst wall of Contracaecum larva and the histopathology in the stomach of Silurus glanis. Rafidain Journal of Science, 19(4), 59–71.

[15] 11. Gökçen, A. (2008). Fixation, staining and preparation of permanent mounts of helminths. Turkiye parazitolojii dergisi, 32(2), 177-181.

[16] 12. Hoffman, G. L. (2019). Parasites of North American freshwater fishes. Cornell University Press.

[17] 13. Khalili Tilami, S., & Sampels, S. (2017). Nutritional value of fish: lipids, proteins, vitamins, and minerals. Reviews in Fisheries Science & Aquaculture, 26(2), 243-253.

[18] 14. Mocho, J. P., Blasco, J. R., Lundegaard, P. R., McKimm, R., Jenčič, V., & Krogh, K. V. (2025). Methods of humane killing of laboratory fish: FELASA Working Group recommendations. Laboratory Animals, 59(5), 599-613.

[19] 15. Marcogliese, D.J. (2016). The distribution and abundance of parasites in aquatic ecosystems in a changing climate: More than just temperature. Integrative and Comparative Biology, 56(4), 611–619.

[20] 16. Marcogliese, D.J. (2008). The impact of climate change on the parasites and infectious diseases of aquatic animals. Revue Scientifique et Technique, 27(2), 467–484.

[21] 17. Moravec, F. (1994). Parasitic nematodes of freshwater fishes of Europe (Vol. 470). Dordrecht: Kluwer Academic Publishers.

[22] 18. Noor El-Deen, A. I.; Abd El Hady, O. K.; Liala, A. M. and Zaki, M. S. (2015). A trial for control of some parasites diseases cultured Orechromis niloticus in Egypt. Life Sci. J., 12(8): 25-29.

[23] 19. Oybek, A., Bakhrom, S., Eldor, N., Jaloliddin, N., Karomat, B., Rokhatoy, K., & Abdurakhim, K. (2025). Morphological and Molecular Survey of Contracaecum Larvae (Nematoda: Anisakidae); Endoparasites of Fish in Uzbekistan. Egyptian Journal of Aquatic Biology & Fisheries, 29(2).

[24] 20. Ozer, A. (1999). The relationship between occurrence of ectoparasites, temperature and culture conditions: a comparison of farmed and wild common carp (Cyprinus carpio L., 1758) in the Sinop region of northern Turkey. Journal of Natural History, 33(4), 483-491.

[25] 21. Pritchard, M. H., & Kruse, G. O. (Eds.). (1982). The collection and preservation of animal parasites (pp. iv-+).

[26] 22. Shamsi, S., Turner, A., & Wassens, S. (2018). Description and genetic characterization of a new Contracaecum larval type (Nematoda: Anisakidae) from Australia. Journal of Helminthology, 92(2), 216-222.

[27] 23. Vuić, N., Turković Čakalić, I., Vlaičević, B., Stojković Piperac, M., & Čerba, D. (2022). The influence of Contracaecum larvae (Nematoda, Anisakidae) parasitism on the population of Prussian carp (Carassius gibelio) in Lake Sakadaš, Croatia. Pathogens, 11(5), 600.

[28] 24. Younis, A. E., Saad, A. I., & Rabei, J. M. (2017). The occurrence of Contracaecum sp. larvae (Nematoda: Anisakidae) in four teleostean species from Lake Nasser, Egypt: morphological and molecular studies. The Journal of Basic and Applied Zoology, 78(1), 9.‏